鼠棒状杆菌——Corynebacterium kutscheri
2019-07-26 维通利华——实验动物常见病原体 北京维通利华
鼠棒状杆菌（假结核菌）
Corynebacterium kutscheri(Pseudotuberculosis)
分类
革兰氏阳性小棒状杆菌
种属
棒状杆菌科
易感动物
大小鼠、地鼠，可能所有实验啮齿类动物， 豚鼠偶尔感染，沙鼠不感染。
感染频率
鼠棒状杆菌几乎不在实验室内传播，自然情况下褐家鼠易感，野鼠和宠物鼠流行情况未知。
传播
主要通过粪口传播。在人工接种条件下，动物通过粪便排菌达5 个月，感染持续存在， 动物不能消除感染。不同小鼠品系对细菌定植和疾病发展的易感性不同，C57BL/6 耐受， BALB/c 易感。性别也是一个因素。公鼠对疾病及携带状态更易感。据报道，人类感染鼠棒状杆菌的案例：婴儿被感染的大鼠咬伤， 感染了鼠棒状杆菌。
临床症状及病变
鼠棒状杆菌的临床症状通常不明显。可以在动物的口腔、颈部淋巴结、胃肠道中发现鼠棒状杆菌但没有临床症状。伴随年龄、压力、实验操作、免疫低下，可能出现血液传播。出现的症状无特异性，通常体重减轻，皱皮。并且大鼠会出现呼吸疾病和血泪症。
鼠棒状杆菌感染典型的病理变化在小鼠的肝、肾、和肺脏上主要呈现灰白色结节，而大鼠主要在肺脏上呈现。这些结节通常很小，但某些直径可在1cm 以上。在动物的其他组织上也会发现结节，例如，皮下组织、关节、脾脏和淋巴结，但不常见。在显微镜下观察， 病变有坏死中心（干酪样坏死灶）环绕大量嗜中性粒细胞。在脓性病变部位很容易观察到病原体。
诊断
初始诊断对病变组织进行镜下观察，革兰氏染色或压印涂片后在显微镜下观察到病变部位小杆菌簇。细菌培养是一种明确的诊断方法，可用选择性FCN 培养基- 一种含呋喃唑酮，萘啶酸，结肠霉素的脑心浸出液培养基，抑制革兰氏阴性棒状菌生长，可用于培养鼠棒状杆菌。无商品化血清学方法。PCR 检测鼠棒状杆菌也是可行的方法，但是没有被广泛的应用。
对研究的影响
动物可携带鼠棒状杆菌而无疾病效应，循环抗体及病变。然而任何对免疫系统的干扰都会导致疾病的爆发使动物无法使用。携带鼠棒状杆菌的动物不能用于研究和检测。
防治
鼠棒状杆菌对动物设施中常用消毒剂敏感。任何化学和机械的消毒方法都可以从环境中消灭鼠棒状杆菌。从海水中可以分离出鼠棒状杆菌， 并且鼠棒状杆菌在4℃ PBS（磷酸缓冲溶液） 中存活8 周。无文献涉及环境中鼠棒状杆菌持续时间。用抗生素治疗病畜是不能降低携带状态，也不能消除垫料和笼具表面上的细菌。所以只推荐减轻用于净化的动物临床症状。无治疗动物鼠棒状杆菌的报道。分离的牛棒状杆菌对四环素、恩氟沙星、氨苄西林敏感，分离的鼠棒状杆菌可能有相似的敏感性。
References
Amao H, Kanamoto T, Komukai Y, Takahashi KW, Sawada T, Saito M, Sugiyama M. 1995. Pathogenicity of Corynebacterium kutscheri in the Syrian hamster. The Journal of Veterinary Medical Science / The Japanese Society of Veterinary Science 57:715-719.
Amao H, Komukai Y, Sugiyama M, Takahashi KW, Sawada T, Saito M. 1995. Natural habitats of Corynebacterium kutscheri in subclinically infected ICGN and DBA/2 strains of mice. Lab Anim Sci 45:6-10.
Amao H, Komukai Y, Akimoto T, Sugiyama M, Takahashi KW, Sawada T, Saito M. 1995. Natural and subclinical Corynebacterium kutscheri infection in rats. Lab Anim Sci 45:11-14.
Amao H, Akimoto T, Komukai Y, Sawada T, Saito M, Takahashi KW. 2002. Detection of Corynebacterium kutscheri from the oral cavity of rats. Exp Anim 51:99-102.
Amao H, Moriguchi N, Komukai Y, Kawasumi H, Takahashi K, Sawada T. 2008. Detection of Cor ynebacterium kutscheri in the faeces of subclinically infected mice. Lab Anim 42:376-382.
Baker DG. Natural Pathogens of Laboratory Animals: Their effects on research. Washington, D.C.: ASM Press; 2003. 385 pp.
Boot R, Thuis H, Bakker R, Veenema JL. 1995. Serological studies of Corynebacterium kutscheri and coryneform bacteria using an enzyme- linked immunosorbent assay (ELISA). Lab Anim 29:294-299.
Fauve RM, Pierce-Chase CH, Dubos R. 1964. Corynebacterial pseudotuberculosis in mice. II. Activation of natural and experimental latent infections. J Exp Med 120:283-304.
Fox JG, Anderson LC, Lowe FM, Quimby FW, editors. Laboratory Animal Medicine. 2nd ed. San Diego: Academic Press; 2002. 1325 pp.
Fox J, Bar thold S, Davisson M, Newcomer C, Quimby F, and Smith A editors. The Mouse in Biomedical Research: Diseases. 2nd ed. New York: Academic Press; 2007. 756 pp.
Holmes NE, Korman TM. 2007. Corynebacterium kutscheri infection of skin and soft tissue following rat bite. J Clin Microbiol 45:3468-3469.
Komukai Y, Amao H, Goto N, Kusajima Y, Sawada T, Saito M, Takahashi KW. 1999. Sex differences in susceptibility of ICR mice to oral infection with Corynebacterium kutscheri. Exp Anim 48:37-42.
Percy DH, Barthold SW. Pathology of Laboratory Rodents and Rabbits. Ames: Iowa State University Press; 2007. 325 pp.
Pierce-Chase CH, Fauve RM, Dubos R. 1964. Corynebacterial pseudotuberculosis in mice. I. Comparative susceptibility of mouse strains to experimental infection with Cor ynebacterium kutscheri. J Exp Med 120:267-281.
Suzuki E, Mochida K, Takayama S, Saitoh M, Orikasa M, Nakagawa M. 1986. Serological sur veys of Corynebacterium kutscheri infection in mice and rats.
Jikken Dobutsu 35:485-489.
Vallee A, Guillon JC, Cayeux P. 1969. [Isolation of a strain of Corynebacterium kutscheri in a guinea pig]. Bulletin de l’Academie veterinaire de France 42:797- 800.
（本文由维通利华检测室-宋思霖翻译整理。如需转载请联系维通利华市场部Marketing@criver.cn，并标明出处。）
北京维通利华实验动物技术有限公司
Beijing Vital River Laboratory Animal Technology Co., Ltd.
E-mail:RADS@criver.cn
Tel:+86.10.8492 4709